Análisis farmacocinético de la inyección intraarticular de insulina y su efecto sobre la expresión del IGF-1 en el líquido sinovial de caballos sanos
DOI:
https://doi.org/10.22319/rmcp.v13i2.5942Keywords:
Insulina, Intraarticular, Caballo, IGF-1, HPLCAbstract
La insulina induce la mitosis en los condrocitos equinos in vitro y mejora la producción de colágeno tipo II. La insulina, cuando se administra vía intraarticular, cambia la composición del líquido sinovial, incluyendo las concentraciones de glucosa, insulina y los niveles de glucemia. La concentración de insulina en la articulación se midió mediante cromatografía líquida de alta resolución (HPLC, por sus siglas en inglés), que proporcionó valores farmacocinéticos. A seis caballos de raza mixta se les administraron tres dosis diferentes de insulina en una articulación antebraquiocarpiana (10, 15 y 20 UI) y se administró solución salina isotónica en la articulación contralateral. La concentración de glucosa en sangre cambió significativamente a través del tiempo para las tres dosis (P<0.0001). No se encontraron diferencias significativas en la concentración de proteínas y el recuento celular en el líquido sinovial entre las articulaciones tratadas y de control (P>0.05), no se encontró diferencia significativa en las concentraciones de glucosa sinovial entre las articulaciones tratadas y de control (P>0.05). Los valores obtenidos mediante HPLC se analizaron con PKAnalyst, esto reveló que los valores farmacocinéticos eran dependientes de las dosis, no hubo diferencia significativa en la concentración de glucosa en sangre entre las tres diferentes dosis (P>0.05). ELISA para el IGF-1 (factor de crecimiento similar a la insulina 1) reveló una diferencia significativa entre las articulaciones tratadas y de control (P<0.001). La insulina utilizada en este estudio demostró ser inocua para la articulación equina, no se deben administrar más de 20 UI para un caballo de 350-400 kg.
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References
Celeste C, Ionescu M, Poole RA. Repeated intra-articular injections of triamcinolone acetonide alter cartilage matrix metabolism measured by biomarkers in synovial fluid. J Orthop Res 2005;(23):602-610. doi: 10.1016/j.orthres.2004.10.003.
Gotoh S, Onaya J, Abe M, Miyazaki K, Hamai A, Horie K, Tokuyasu K. Effects of the molecular weight of hyaluronic acid and its action mechanisms on experimental joint pain in rats. Ann Rheum Dis 1993;(52):817-822. doi: 10.1136/ard.52.11.817.
Henson FMD, Davenport C, Butler L, Moran I, Shingleton WD, Jeffcott LB, Schofield PN. Effects of insulin and insulin-like growth factors I and II on the growth of equine fetal and neonatal chondrocytes. Eq Vet J 1997;(29):441-447. doi: 10.1111/j.2042-3306.1997.tb03156.x.
Schumacher HR. Aspiration and injection therapies for joints. Arthitis Rheumatol 2003;(49):413-420. doi: 10.1002/art.11056.
Davenport C, Boston R, Richardson DW. Effects of insulin-like growth factor-II on the mitogenic and metabolic activities of equine articular cartilage with and without interleukin 1-β. Am Vet Res 2004;(65):238-244. doi: 10.2460/ajvr.2004.65.238.
Henneke DR, Potter GD, Kreider JL, Yeates BF. Relationship between condition score, physical measurements and body fat percentage in mares. Eq Vet J 1983;15,371-372. doi: 10.1111/j.2042-3306.1983.tb01826.x
Frank N. Equine metabolic syndrome. Vet Clin North Am Equine Pract 2011;(27):73-92. doi: 10.1016/j.cveq.2010.12.004.
Smith JS, Ratzlaff MH, Grant BD, Frank FL. The synovial fluid volume of the radiocarpal, intercarpal and tibiotarsal joints of a horse. J Eq Med Surg 1979;(3):479-483.
Moyer W, Schumacher J. A guide to equine joint and regional anesthesia. 4th ed . USA: Academic Veterinary Solutions, LLC; 2007.
Mahmood I. Naive pooled-data approach for pharmacokinetic studies in pediatrics with a very small sample size. Am J Ther 2014;(21):269-74. doi:10.1097/MJT.0b013e31824ddee3.
Hafiz Mohd MJ, Affandi MMR, Ah K, Sepria L. A simple and sensitive method for the determination of insulin in rat plasma and its application in pharmacokinetic study. Int J Pharm Pharm Sci 2013;(5):133-137.
Meyer DJ, Harvey JW. Evaluations of fluids: Effusions, synovial fluid, cerebrospinal fluid. In Veterinary laboratory medicine interpretation and diagnosis. 3rd ed. Saunders, USA. 2004;245-250.
Carter RA, Geor RJ, Burton SW, Cubbit TA, Harris PA. Apparent adiposity assessed by standardized scoring systems and morphometric measurements in horses and ponies. Vet J 2009;(179):204-210. doi: 10.1016/j.tvjl.2008.02.029.
Bertone AL, Cohen JM. Infectious arthritis and fungal infections arthritis. In: Ross MW, Dyson SJ. Diagnosis and management of lameness in the horse. 2nd ed. USA: Saunders; 2011;677-687.
Olds AM, Stewart AA, Freeman DE, Schaeffer DJ. Evaluation of the rate of development of septic arthritis after elective arthroscopy in horses: 7 cases. J Am Vet Med Ass 2006;(229):1949-1954. doi: 10.2460/javma.229.12.1949.
Adams SB. How to avoid complications following joint injections I: Site preparation and selection of needles. AAEP Proc. 2012;58.
Taylor FG, Hillyer MH. Enfermedades musculoesqueléticas. In: Taylor FG, Hillyer MH. Técnicas diagnósticas en medicina equina. Aribia, España. 1997;245-284.
Fortier LA, Strauss EJ, Cole BJ. The role of growth factors in cartilage repair. Clin Orthop Relat Res 2011;(469):2706-2715. doi: 10.1007/s11999-011-1857-3.
Yun CH, Tang YH, Feng YM, An XM, Chang WR, Liang DC. 1.42 Å crystal structure of mini-IGF-1(2): an analysis of the disulfide isomerization property and receptor binding property of IGF-1 based on the three-dimensional structure. Biochem Biophys Res Commun 2005;(326):52-59. doi: 10.1016/j.bbrc.2004.10.203
National Center for Biotechnology information database. 2020. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/ .
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