Ribotipificación de aislamientos de Mannheimia haemolytica serotipo 1 obtenidos de exudado nasal de bovinos productores de leche en México

Autores/as

  • Carlos J Jaramillo-Arango Centro de Enseñanza, Investigación y Extensión en Producción Animal en Altiplano, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, México.
  • Rigoberto Hernández-Castro Hospital General “Dr. Manuel Gea González”, Dirección de Investigación, Secretaría de Salud. México
  • Víctor M Campuzano-Ocampo Departamento de Medicina Preventiva y Salud Pública, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México. México.
  • Gabriela Delgado-Sapiénd Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México. México
  • Rosario Morales-Espinosa Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México. México.
  • Juan Xicohtencatl-Cortés Hospital Infantil de México “Dr. Federico Gómez”, Secretaría de Salud, México.
  • Francisco Suárez-Güemes Departamento de Microbiología e Inmunología, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México. México.
  • Francisco Trigo-Tavera Departamento de Patología, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México.

DOI:

https://doi.org/10.22319/rmcp.v8i2.4447

Palabras clave:

Mannheimia, Ribotipos, Bovinos, Exudado nasal

Resumen

Se realizó la caracterización genética de 106 aislamientos de Mannheimia haemolytica serotipo 1 (S1) obtenidos de exudado nasal de bovinos clínicamente sanos (BCS) (n= 80) y enfermos (BCE) (n= 26) de neumonía de dos granjas lecheras del centro y norte de México, mediante la técnica de ribotipificación. De los cuales se extrajo el DNA para realizar el proceso de digestión con la endonucleasa de restricción HindIII y la posterior ribotipificación, que se realizó utilizando una sonda que contenía el operon rrnB rRNA. Se identificaron dos patrones de ribotipos: Rt1 y Rt2, en ambos casos, con bandas de hibridación con tamaños aproximados entre 0.78 y 19.70 kb. El Rt1 presentó 11 bandas de hibridación y el Rt2 13. El 96 % de los aislamientos (102/106) se agruparon en un cluster dentro del Rt1. Entre el Rt1 y el Rt2 se presentó un valor de similitud de 70 %. No se identificaron diferencias entre los Rt de los aislamientos de los animales BCS o BCE. Estos resultados indican que la mayoría de las cepas se agrupan dentro un mismo Rt (Rt1) conformando un solo cluster, independientemente del origen de las mismas y del estado de salud

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Angen O, Mutters R, Caugant DA, Olsen JE, Bisgaard M. Taxonomic relationships of the [Pasteurella] haemolytica complex as evaluated by DNA-DNA hybridizations and 16SrRNA sequencing with proposal of Mannheimia haemolytica gen., comb.nov., Mannheimia granulomatis comb. nov., Mannheimia glucosida sp. nov., Mannheimia ruminalis sp. nov. and Mannheimia varigena sp. nov. Int J Syst Bacteriol 1999;49:67-86.

Angen O, Quirie M, Donachie W, Bisgaard M. Investigations on the species specificity of Mannheimia (Pasteurella) haemolytica serotyping. Vet Microbiol 1999;65:283-290.

Highlander SK. Molecular genetic analysis of virulence in Mannheimia. Frontiers in Bioscience 2001;6:1128-1150.

Rowe HA, Poxton IR, Donachie W. Survival of Mannheimia (Pasteurella) haemolytica in tracheobronchial washings of sheep and cattle. Vet Microbiol 2001;81:305-314.

Narayanan SK, Nagaraja TG, Chengappa MM, Stewart GC. Leukotoxins of gram-negative bacteria. Vet Microbiol 2002:84:337- 356.

Murphy GL, Robinson LC, Burrows GE. Restriction endonuclease analysis and ribotyping differentiate Pasteurella haemolytica serotype A1 isolates from cattle within a feedlot. Clin Microbiol 1993;31(9):2303-2308.

Chaslus-Dancla E, Lesage-Descauses MC, Leroy-Sétrin S, Martel JL, Courdet P, Lafont JP. Validation of random amplified polymorphic DNA assays for ribotyping as tools for epidemiological surveys of Pasteurella from animals. Vet Microbiol 1996;52:91-102.

Angen O, Ahrens P Bisgaard, M. Phenotypic and genotypic characterization of Mannheimia (Pasteurella) haemolytica-like strains isolated from diseased animals in Denmark. Vet Microbiol 2002;84:103-114.

Blumberg HM, Stephens DS, Licitra C, Pigott N, Facklam R, Swaminathan B, Wachsmuth IK. Molecular epidemiology of group B Streptococcal infections: use of restriction endonuclease analysis of chromosomal DNA and DNA Restriction Fragment Length Polymorphisms of ribosomal RNA genes (Ribotyping). J Infect Dis 1992;166:574-759.

Christensen H, Dziva F, Olsen JE, Bisgaard M. Genotypic heterogneity of Pasteurella gallinarum as shown by ribotyping and 16S rRNA sequencing. Avian Pathol 2002;31:603-610.

Blanco-Viera FJ, Trigo FJ, Jaramillo-Meza L, Aguilar-Romero F. Serotypes of Pasteurella multocida and Pasteurella haemolytica isolated from pneumonic lesions in cattle and sheep from Mexico. Rev Lat-Am Microbiol 1995;37:121-126.

Pijoan P, Aguilar RF, Morales AF. Caracterización de los procesos neumónicos en becerros lecheros de la región de Tijuana, Baja California, México. Vet Méx 1999;30(2):149-155.

Jaramillo-Arango CJ, Hernández-Castro R, Suárez-Güemes F, Martínez-Maya JJ, Aguilar-Romero F, Jaramillo-Meza L, Trigo FJ. Prevalence of Mannheimia haemolytica isolated from bovine nasal exudates and associated factors, in dairy farms in the North-Central of Mexico. J Anim Vet Adv 2007;6(3):404-409.

Jaramillo-Arango CJ, Hernández-Castro R, Suárez-Güemes F, Martínez-Maya JJ, Aguilar-Romero F, Jaramillo-Meza L, Trigo FJ. Characterization of Mannheimia spp. strains isolated from bovine nasal exudates and factors associated to isolates, in dairy farms in the Central Valley of Mexico. Res Vet Sci 2007;84:7-13.

Pitcher DG, Saunders NA, Owen RJ. Rapid extraction of bacterial genomic DNA with guanidium thiocyanate. Lett Appl Microbiol 1989 8:151-158.

Brosius J, Ullrich A, Raker MA, Gray A, Dull TJ, Gutell RR, Noller HF. Construction and fine mapping of recombinant plasmid containing the rrnB ribosomal RNA operon of E. coli. Plasmid 1981;6:112-118.

Kodjo A, Villard L, Bizet Ch, Martel JL, Sanchis R, Borges E, Gauthier D, Maurin F, Richard Y. Pulse-field electrophoresis is more efficient than ribotyping and random amplified polymorphic DNA analysis in discrimination of Pasteurella haemolytica strains. J Clin Microbiol 1999;37(2):380-385.

Blackall PJ, Angen O, Fegan N, Blackall LL, Mutters R, Bisgaard M. Characterisation of a novel Mannheimia sp from Australian feedlot cattle. Aust Vet J 2001;79(9):634-639.

Snipes KP, Hirsh DC, Kasten RW, Hansen LM, Hird DW, Carpenter TE, McCapes RH. Use of an rRNA probe and restriction endonuclease analysis to fingerprint Pasteurella multocida isolated from turkeys and wildlife. J Clin Microbiol 1989;27(8):1847-1853.

Snipes KP, Kasten RW, Wild MA, Miller MW, Jessup DA, Silflow RL, et al. Using ribosomal RNA gene restriction patterns in distinguishing isolates of Pasteurella haemolytica from bighorn sheep (Ovis canadiensis). J Wildl Dis 1992;28(3):347-354.

Saxena MK, Kumar AA, Chaudhari P, Shivachandra SB, Singh VP, Sharma B. Ribotyping of Indian isolates of Pasteurella multocida based on 16S and 23S rRNA genes. Vet Res Commun 2005;29:527- 535.

Angen O, Caugant DA, Olsen JE, Bisgaard M. Genotypic relationships among strains classified under the (Pasteurella) haemolytica-complex as indicated by ribotyping and multilocus enzyme electrophoresis. Zentralb Bakteriol 1997;286:333-354.

Blackall PJ, Fegan N, Chew GTI, Hampson DJ. Population structure and diversity of avian isolates of Pasteurella multocida from Australia. Microbiology 1998;144:279-289.

DeRosa DC, Mechor GD, Staats JJ, Chengappa M, Shryock TR. Comparison of Pasteurella spp. simultaneously isolated from nasal and transtracheal swabs from cattle with clinical signs of bovine respiratory disease. J Clin Microbiol 2000;38(1):327-332.

Sarafian SK, Woods TC, Knapp JS, Swaminathan B, Morse SA. Molecular characterization of of Haemophilus ducreyi by ribosomal DNA fingerprinting. J Clin Microbiol 1991;29:1949-1954.

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Publicado

29.03.2017

Cómo citar

Jaramillo-Arango, C. J., Hernández-Castro, R., Campuzano-Ocampo, V. M., Delgado-Sapiénd, G., Morales-Espinosa, R., Xicohtencatl-Cortés, J., … Trigo-Tavera, F. (2017). Ribotipificación de aislamientos de Mannheimia haemolytica serotipo 1 obtenidos de exudado nasal de bovinos productores de leche en México. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 8(2), 219–224. https://doi.org/10.22319/rmcp.v8i2.4447
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