Efecto de la viscosidad en el medio para la criopreservación espermática de gallo (Gallus gallus)
DOI:
https://doi.org/10.22319/rmcp.v13i1.5917Palabras clave:
Acrosoma, Capacitación espermática, Congelación, Gallus g, SemenResumen
En semen de mamíferos, se ha demostrado que la viscosidad influye de manera negativa para su conservación. En semen de aves los estudios sobre las características físicas de los eyaculados son limitados, particularmente la viscosidad no ha sido estudiada. Los medios para la criopreservación, no consideran la viscosidad para mantener la viabilidad espermática. Por lo cual, el objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de la viscosidad en el medio para mantener su viabilidad post descongelación. Se determinó los parámetros de evaluación básica, de maduración y reacción acrosomal evaluando la presencia y distribución de Ca2+ mediante la co-incubación con clortetraciclina. Se realizaron 25 evaluaciones de pool seminal, criopreservados en medio Lake suplementado con 6 % de dimetilacetamida y con 0 % (Testigo), 10 %, 30 % y 45 % de ficoll, para ajustar la viscosidad del medio a condiciones similares a las del semen y del líquido oviductal y a un grado mayor de viscosidad. La movilidad espermática fue menor (P£0.05) en alícuotas con mayor porcentaje de ficoll. El porcentaje de espermatozoides vivos fue similar (P>0.05) en el testigo y todas las alícuotas con diferente porcentaje de ficoll. La maduración espermática presentó un mayor (P£0,05) porcentaje de espermatozoides no capacitados cuando se utilizó 10% de ficoll. De manera inversa el porcentaje de espermatozoides con reacción acrosomal fue menor (P£0,05) también cuando se utilizó 10 % de ficoll. Los resultados de este estudio demuestran que variaciones en el grado de viscosidad del medio, pueden mantener o incrementar la viabilidad espermática post descongelación.
Descargas
Citas
Herrera JA, Quintana JA, López M, Betancourt M, Fierro R. Individual cryopreservation with dimethyl sulfoxide and polyvinylpyrrolidone of ejaculates and pooled semen of three avian species. Arch Androl 2005;51(5):353-360. doi: 10.1080/014850190944401.
Bootwalla S. Froman D. Effect of extender viscosity on the insemination dose for chickens. Poult Sci 1988;67(8):1218-1221. doi: 10.3382/ps.0671218.
Adams G, Ratto M, Collins C, Bergfelt D. Artificial insemination in South American camelids and wild equids. Theriogenology 2009;71(1):166-175. doi: 10.1016/j.theriogenology.2008.09.005.
Bravo P, Alarcon V, Baca L, Cuba Y, Ordonez C, Salinas J, Tito, F. Semen preservation and artificial insemination in domesticated South American camelids. Anim Rep Sci 2013;136(3):157-163. doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.10.005.
El-Bahrawy K, Rateb S, Khalifa M, Monaco D, Lacalandra G. Physical and kinematic properties of cryopreserved camel sperm after elimination of semen viscosity by different techniques. Anim Rep Sci 2017;187(sn):100-108. doi: 10.1016/j.anireprosci.2017.10.011.
Holt W. Germoplasm cryopreservation in elephants and wildt ungulates. In: Cryobanking the genetic resource. Wildlife conservation for the future? Watson PF, Holt W, editors. CRC Press. 2001:319-348.
Baskt M, Wishart G, Brillard J. Oviductal sperm selection, transport, and storage in poultry. Poult Sci Rev 1994;5(3):117-143.
Blesbois E, Brillard J. Specific features of in vivo and in vitro sperm storage in birds. Animal 2007;1(10):1472-1481. doi: 10.1017/S175173110700081X.
Baskt M, Bauchan G. Lectin staining of the uterovaginal junction and sperm-storage tubule epithelia in broiler hens. Poult Sci 2016;95(4):948-955. doi.org/10.3382/ps/pev440.
Santiago-Moreno J, Esteso M, Villaverde-Morcillo S, Toledano-Diaz A, Castano C, Velázquez R, et al. Recent advances in bird sperm morphometric analysis and its role in male gamete characterization and reproduction technologies. Asian J Androl 2016;18(6):882-888. doi: 10.4103/1008-682X.188660.
Lemoine M, Grasseau I, Brillard J, Blesbois E. A reappraisal of the factors involved in vitro initiation of the acrosome reaction in chicken spermatozoa. Reproduction 2008;136(4):391. doi:10.1530/REP-08-0094.
Longobardi V, Albero G, De Canditiis D, Salzano A, Natale A, Balestrieri A, Neglia G, Campanile G, Gasparrini B. Cholesterol-loaded cyclodextrins prevent cryocapacitation damages in buffalo (Bubalus bubalis) cryopreserved sperm. Theriogenology 2017;89(sn):359–364. doi: 10.1016/j.theriogenology.2016.09.048
Laffaldano N, Di Iorio M, Cerolini S, Manchisi A. Overview of turkey semen storage: focus on cryopreservation. Annals Anim Sci 2016;16(4):961-974. https://doi.org/10.1515/aoas-2016-0026.
Norma Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999. Especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio.
Burrows W, Quinn J. The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey. J Poult Sci 1937;16(1):19-24. https://doi.org/10.3382/ps.0160019.
Lake P. The principles and practice of semen collection and preservation in birds. In: Symposia of the Zoological Society of London. 1978;43:31–49.
Camarillo R, Jiménez I, Guzmán A, Rosales A, Rodríguez F, Pérez-Rivero J, Herrera J. Oviductal proteins effect in rooster spermatic cryopreservation. CryoLetters 2019; 40(6): 352-356. http://www.cryoletters.org/Abstracts/vol_40_6_2019.htm.
Fischer DH, Failing SK, Meinecke‐Tillmann S, Wehrend A, Lierz M. Viability assessment of spermatozoa in large falcons (Falco spp.) using various staining protocols. Reprod Dom Anim 2020;55(10):1383-1392. https://doi.org/10.1111/rda.13785.
Lemoine M, Mignon S, Grasseau I, Magistrini M, Bleisbois E. Ability of chicken spermatozoa to undergo acrosome reaction after liquid storage or cryopreservation. Theriogenology 2011;75(1):122-130. doi: 10.1016/j.theriogenology.2010.07.017.
Herrera JA, Calderón G, Guzmán A, Vargas AK, Ávalos A, Rosales A. Evaluation of two diluents for the storage of fresh and cryopreserved eyaculado of Harris hawk (Parabuteo unicinctus). Autrals J Vet Sci 2017;49(1):39-43. doi.org/10.4067/s0719-81322017000100039.
Hammer Ø, Harper D, Ryan P. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis. Paleontología Electrónica 2001;4(1):1-9.
Donoghue A, Wishart G. Storage of poultry semen. Anim Rep Sci 2000;62(1-3):213- 232. doi: 10.1016/s0378-4320(00)00160-3.
Skidmore J. The use of some assisted reproductive technologies in old world camelids. Anim Rep Sci 2019; 207(sn):138-145. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.06.001.
Al-Bulushi S, Manjunatha B, Bathgate R, Rickard J, De Graaf S. Liquid storage of dromedary camel semen in different extenders. Anim Rep Sci 2019; 207(sn):95-106. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.06.008.
Lemoine, M. Potential involvement of several signaling pathways in initiation of the chicken acrosome reaction. Biol Rep 2009;81(4):657–665. doi: 10.1095/biolreprod.108.072660.
Ali M, Musa M, Alfadul S, Al-Sobayel K. Effect of gum arabic on stallion sperm survival during cold storage and post freezing. Mac Vet Rev 2018;41(1):21-31. https://doi.org/10.1515/macvetrev-2017-0026.
Lemoine M, Grasseau I, Brillard JP, Blesbois E. A reappraisal of the factors involved in in vitro initiation of the acrosome reaction in chicken spermatozoa. Reproduction 2008;136(4):391-399. doi: 10.1530/REP-08-0094.
Abouelezz F, Sayed M, Santiago-Moreno J. Fertility disturbances of dimethylacetamide and glycerol in rooster sperm diluents: Discrimination among effects produced pre and post freezing-thawing process. Anim Rep Sci 2017;184(sn):228-234. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2017.07.021.
Mocé E, Grasseau I, Blesbois E. Cryoprotectant and freezing-process alter the ability of chicken sperm to acrosome react. Anim Rep Sci 2010;122(3-4):359-366. doi: 10.1016/j.anireprosci.2010.10.010.
Descargas
Publicado
Cómo citar
-
Resumen576
-
PDF452
-
PDF 196
-
Texto completo224
Número
Sección
Licencia
Los autores/as que publiquen en la Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias aceptan las siguientes condiciones:
De acuerdo con la legislación de derechos de autor, la Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias reconoce y respeta el derecho moral de los autores/as, así como la titularidad del derecho patrimonial, el cual será cedido a la revista para su difusión en acceso abierto.
Esta obra está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.
