Análisis genético del bovino Criollo Mixteco de Oaxaca

Autores/as

  • Miguel Ángel Domínguez Martínez Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Cuerpo Académico Ciencias Veterinarias Aplicadas al Desarrollo Regional. Av. Universidad S/N. Ex-Hacienda 5 Señores, 68120. Oaxaca de Juárez, Oaxaca, México. https://orcid.org/0000-0001-5630-4714
  • Víctor Hernández Núñez Universidad Tecnológica de la Mixteca, Brigada de Promoción del Desarrollo. Oaxaca, México. https://orcid.org/0000-0002-8440-5704
  • Araceli Mariscal Méndez Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Cuerpo Académico Ciencias Veterinarias Aplicadas al Desarrollo Regional. Av. Universidad S/N. Ex-Hacienda 5 Señores, 68120. Oaxaca de Juárez, Oaxaca, México. https://orcid.org/0000-0003-2755-7055
  • Amparo Martínez Martínez Universidad de Córdoba, Facultad de Veterinaria. Córdoba, España. https://orcid.org/0000-0002-6944-0501
  • Gisela Fuentes-Mascorro Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Cuerpo Académico Ciencias Veterinarias Aplicadas al Desarrollo Regional. Av. Universidad S/N. Ex-Hacienda 5 Señores, 68120. Oaxaca de Juárez, Oaxaca, México. https://orcid.org/0000-0002-3909-3342

DOI:

https://doi.org/10.22319/rmcp.v14i2.6315

Palabras clave:

Caracterización genética, Microsatélites, Conservación, Bovino criollo

Resumen

El bovino Criollo Mixteco es un recurso genético poco explorado, pero de gran valor por su potencial para ser empleado en sistemas de producción respetables con el entorno y adaptables a las condiciones del mismo. La identificación y caracterización de este recurso local es un punto primordial para su conservación y mejora, es por esto que en el presente estudio se llevó a cabo el análisis de la diversidad y relaciones genéticas de la población de bovinos Criollos Mixtecos de Oaxaca, mediante el empleo de 19 marcadores de ADN microsatélites y 32 poblaciones bovinas de referencia, pertenecientes al consorcio BIOBOVIS de la Red CONBIAND. El número medio de alelos detectados fue de 8.8 ± 2.1 y el número efectivo de alelos estimado fue de 4.5 ± 1.2. La diversidad genética representada por los valores de heterocigosidad esperada (0.7700 ± 0.0682) y observada (0.7170 ± 0.0998), se encontró dentro del rango de estimadores obtenidos en estudios previos con poblaciones bovinas locales empleando marcadores microsatélites. El análisis de la estructura poblacional reveló una influencia predominante de germoplasma ibérico (Bos taurus). Se observa además una estrecha relación entre el Criollo Mixteco y el resto de poblaciones bovinas criollas mexicanas a excepción del Criollo Lechero Tropical.

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Biografía del autor/a

Miguel Ángel Domínguez Martínez, Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Cuerpo Académico Ciencias Veterinarias Aplicadas al Desarrollo Regional. Av. Universidad S/N. Ex-Hacienda 5 Señores, 68120. Oaxaca de Juárez, Oaxaca, México.

Profesor Investigador de Tiempo Completo, Titular A

Laboratorio de Genética Molecular y Zoonosis

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia

Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca

Víctor Hernández Núñez, Universidad Tecnológica de la Mixteca, Brigada de Promoción del Desarrollo. Oaxaca, México.

Brigada de Promoción del Desarrollo

Universidad Tecnológica de la Mixteca

Araceli Mariscal Méndez, Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Cuerpo Académico Ciencias Veterinarias Aplicadas al Desarrollo Regional. Av. Universidad S/N. Ex-Hacienda 5 Señores, 68120. Oaxaca de Juárez, Oaxaca, México.

Profesora Investigadora

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia

Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca

Amparo Martínez Martínez, Universidad de Córdoba, Facultad de Veterinaria. Córdoba, España.

Investigadora

Laboratorio de Marcadores Moleculares

Departamento de Genética

Universidad de Córdoba, España

Gisela Fuentes-Mascorro, Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Cuerpo Académico Ciencias Veterinarias Aplicadas al Desarrollo Regional. Av. Universidad S/N. Ex-Hacienda 5 Señores, 68120. Oaxaca de Juárez, Oaxaca, México.

Profesora Investigadora de Tiempo Completo

Laboratorio de Investigación en Reproducción Animal

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia

Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca

Citas

Fernández de Sierra G, Gómez-Castro AG. Caracterización, utilización y conservación de los recursos zoogenéticos locales. Arch Zootec 2007;56(1):377-378.

da Silva A. El plan de acción mundial de la FAO sobre los recursos zoogenéticos y su aplicación en Latinoamérica y el Caribe. RCCA 2014;48(1):35–41.

Méndez M, Ávila R, Serrano J, Rosas M, Méndez N. Caracterización morfométrica del bovino criollo mixteco. Arch Zootec 2002;51(194):217–221.

Fuentes-Mascorro G, Pérez Vargas E, Carmona Medero MA. Los bovinos criollos de Oaxaca y su importancia. Etnozoología de recursos zoogenéticos Oaxaca y Zulia. México: Editorial Armadillo; 2011:1–9.

Parra-Cortés R, Magaña-Magaña MA, Piñeiro-Vázquez A. Intensificación sostenible de la ganadería bovina tropical basada en recursos locales: alternativa de mitigación ambiental para América Latina. ITEA-Inf Tec Econ Agrar 2019;115(4):342-359.

FAO. The state of the world’s animal genetic resources for food and agriculture. Italy. Commission on genetic resources for food and agriculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2007.

Delgado JV, Martínez AM, Acosta A, Álvarez LA, Armstrong E, Camacho E, et al. Genetic characterization of Latin-American creole cattle using microsatellite markers. Anim Genet 2011;43(1):2-10.

Martínez AM, Gama LT, Cañón J, Ginja C, Delgado JV, Dunner S, et al. Genetic footprints of Iberian cattle in America 500 years after the arrival of Columbus. PLoS One 2012;7(11):e49066.

Gama LT, Martinez AM, Ginja C, Cañon J, Martin-Burriel I, Revidatti MA, et al. Genetic diversity and structure of Iberoamerican livestock breeds. Freitas DA, Lopes da Costa L. Advances in animal health, medicine and production. Cham, Suitzrland: Springer International Publishing; 2020:52-68.

Ginja C, Gama LT, Cortes Ó, Delgado JV, Dunner S, García D, et al. Analysis of conservation priorities of Iberoamerican cattle based on autosomal microsatellite markers. Genet Sel 2013;45(1):1-18.

Fuentes-Mascorro G, Cruz-Matías J, Pérez-Vargas E, Carmona-Medero MA. Bovinos criollos de Oaxaca. Perezgrovas-Garza RA. Catálogo ilustrado de los bovinos criollos de México. Universidad Autónoma de Chiapas. México 2017:31-45.

Hale ML, Burg TM, Steeves TE. Sampling for microsatellite-based population genetic studies: 25 to 30 individuals per population is enough to accurately estimate allele frequencies. PLoS One 2012;7(9):e45170.

FAO. Molecular genetic characterization of animal genetic resources. Italy. Commission on genetic resources for food and agriculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2011.

FAO. Secondary guidelines for development of national farm animal genetic resources management plans. Measurement of Domestic Animal Diversity (MoDAD). Recommended microsatellite markers. Italy. Commission on genetic resources for food and agriculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2004.

Yeh F, Boyle T, Ye Z, Xiyan JM, Ye ZH. Popgene Version 1.31 Microsoft window-based freeware for population genetic analysis. BMC Microbiol 1999;12(1):39.

Excoffier L. Lischer HEL. An integrated software package for population genetics data analysis. Mol Ecol Resour 2010;10(1):564–567.

Ginja C, Gama LT, Cortés O, Burriel IM, Vega-Pla JL, Penedo C, et al. The genetic ancestry of American Creole cattle inferred from uniparental and autosomal genetic markers. Sci Rep 2019;9(1):e11486.

Pritchard JK, Stephens M, Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics 2000;155(2):945–959.

FAO. In vivo conservation of animal genetic resources. Italy. Commission on genetic resources for food and agriculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2013.

Delgado JV, Barba CJ, Aguirre EL, Cabezas R, Cevallos OF, et al. Molecular inference in the colonization of cattle in Ecuador. Res Vet Sci 2020;132:357-368.

Ginja C, Penedo MCT, Melucci L, Quiroz J, Martínez-López OR, Revidatti MA, et al. Origins and genetic diversity of New World creole cattle: inferences from mitochondrial and Y chromosome polymorphisms. Anim Genet 2010;41:128-141.

Giovambattista G, Ripoli MV, de Luca JC, Mirol PM, Liron JP, Dulout FN. Male-mediated introgression of Bos indicus genes into Argentine and Bolivian creole cattle breeds. Anim Genet 2000;31(5):302-305.

Miretti MM, Dunner S, Naves M, Contel EP, Ferro JA. Predominant African-derived mtDNA in Caribbean and Brazilian creole cattle is also found in Spanish cattle (Bos taurus). J Hered 2004;95(5):450-453.

Carvajal-Carmona LG, Bermudez N, Olivera-Angel M, et al. Abundant mtDNA diversity and ancestral admixture in Colombian criollo cattle (Bos taurus). Genetics 2003;165(3):1457-1463.

Schmidt TL, Jasper ME, Weeks AR, Hoffmann AA. Unbiased population heterozygosity estimates from genome-wide sequence data. Methods Ecol Evol 2021;12:1888-1898.

Greenbaum G, Templeton AR, Zarmi Y, Bar-David S. Allelic richness following population founding events--a stochastic modeling framework incorporating gene flow and genetic drift. PLoS One 2014;9(12):e115203.

Weir BS. Genetic data analysis. Sunderland, MA: SinauerAssociates. 1990.

Caballero A, García-Dorado A. Allelic diversity and its implications for the rate of adaptation. Genetics 2013;195(4):1373-1384.

Botstein D, White RL, Skolnick M, Davis RW. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms. Am J Hum Genet 1980;32(3):314–331.

Giles BE, Goudet J. Genetic differentiation in Silene dioica metapopulations: estimation of spatiotemporal effects in a successional plant species. Am Nat 1997;149(3):507–526.

Wright S. The interpretation of population structure by F-statistics with special regard to systems of mating. Evol 1965;19:395-420.

Palacios EY, Álvarez L, Muñoz J. Genetic diversity of Creole hens of the Colombian southwest. Arch Zootec 2016;65(249):73-78.

Ocampo RJ, Martínez JF, Martínez R. Assessment of genetic diversity and population structure of Colombian creole cattle using microsatellites. Trop Anim Health Prod 2021;53(1):122.

Graffelman J, Weir B. The transitivity of the Hardy-Weinberg law. Forensic Sci Int Genet 2022;58:e102680.

Egito AA, Paiva SR, et al. Microsatellite based genetic diversity and relationships among ten Creole and commercial cattle breeds raised in Brazil. BMC Genet 2007;8:83.

McTavish EJ, Decker JE, Schnabel RD, Taylor JF, Hillis DM. New world cattle show ancestry from multiple independent domestication events. Proc Natl Acad Sci 2013;110(15):1398–1406.

Decker JE, McKay SD, Rolf MM, Kim J, Molina-Alcalá A, Sonstegard TS, et al. Worldwide patterns of ancestry, divergence, and admixture in domesticated cattle. PLoS Genet 2014;10(3):e1004254.

Gautier M, Naves M. Footprints of selection in the ancestral admixture of a New world creole cattle breed. Mol Ecol 2011;20:3128-3143.

Publicado

03.04.2023

Cómo citar

Domínguez Martínez, M. Ángel, Hernández Núñez, V., Mariscal Méndez, A., Martínez Martínez, A., & Fuentes-Mascorro, G. (2023). Análisis genético del bovino Criollo Mixteco de Oaxaca. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 14(2), 434–449. https://doi.org/10.22319/rmcp.v14i2.6315
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