Determinación de la seroconversión inducida por dos tratamientos contra parvovirus porcino e identificación del parvovirus porcino 4 en cerdas con signología reproductiva

Autores/as

  • José de la Luz Luevano Adame Universidad Nacional Autónoma de MéxicoUniversidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Posgrado en Ciencias de la Producción y Salud Animal, Ciudad de México, México https://orcid.org/0000-0003-1639-9717
  • Francisco Ernesto Martínez Castañeda Universidad Autónoma del Estado de México. Instituto de Ciencias Agropecuarias y Rurales. Estado de México, México https://orcid.org/0000-0003-0168-921X
  • Rosa Elena Sarmiento Silva Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Departamento de Microbiología. Ciudad de México. México
  • Concepción Díaz Rayo Diagnósticos integrales en patología animal A.C. Ciudad Obregón, Sonora. México
  • Fernando Gonzáles Peraza Diagnósticos integrales en patología animal A.C. Ciudad Obregón, Sonora. México
  • Ramón Miguel Molina Barrios Instituto Tecnológico de Sonora. Departamento de Ciencias Agronómicas y Veterinarias. Ciudad Obregón, Sonora. México
  • Lourdes Estefany Soto Enríquez Instituto Tecnológico de Sonora. Departamento de Ciencias Agronómicas y Veterinarias. Ciudad Obregón, Sonora. México
  • Raquel Elena Martínez López Instituto Tecnológico de Sonora. Departamento de Ciencias Agronómicas y Veterinarias. Ciudad Obregón, Sonora. México
  • Erika N. Hernández Villegas Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Departamento de Microbiología. Ciudad de México. México
  • Elemi García Hernández Montserrat Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Departamento de Microbiología. Ciudad de México. México
  • Rolando Beltrán Figueroa Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Departamento de Medicina y Zootecnia de Cerdos. Ciudad de México. México
  • María Elena Trujillo Ortega Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Departamento de Medicina y Zootecnia de Cerdos. Ciudad de México. México

DOI:

https://doi.org/10.22319/rmcp.v16i2.6787

Palabras clave:

Vaccine, Feedback, Porcine Parvovirus, Parvovirus 4, Control Strategies

Resumen

El parvovirus porcino causa fetos momificados y muerte fetal. Los programas de inmunización se basan en: vacunas comerciales y el feedback (administración oral de un macerado de fetos momificados por parvovirus). En el presente estudio evaluó la seroconversión de estos dos métodos, en una granja en Sonora, México, con problemas reproductivos. Las cerdas de reemplazo se dividen en: T1, feedback a las 24 semanas de edad y T2, vacuna comercial (parvovirus porcino), a las 24 y 27 semanas de edad. Las cerdas multíparas: T3, feedback al destete y T4, vacuna comercial dos semanas antes del parto. Se tomaron muestras de suero la semana previa a la administración de los tratamientos (T0) y tres semanas después, para evaluar la respuesta inmune. Los T1, T2, T3 y T4 seroconvirtieron 90, 83,78 y 50 % respectivamente. La presencia del genoma de parvovirus porcino, se analizó por PCR en punto final, utilizando indicadores específicos (genotipos 1 al 6) con la presencia de Parvovirus porcino 4, en muestras de T1, T2 y T4, las cuales se analizan por secuenciación de siguiente generación y se confirma parvovirus porcino 4, además de la identificación de otros virus, bacterias, hongos y parásitos. La presencia de parvovirus porcino 4, resalta la importancia de evaluar los programas de medicina preventiva, bajo las condiciones específicas de cada granja, para optimizar la prevención de cuadros reproductivos, ya que las vacunas comerciales pueden no ser efectivas y el tratamiento de feedback puede favorecer la diseminación de otros patógenos que se encuentren presentes en la granja.

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Aishwarya J, Ravishankar C, Rajasekhar R, Sumod K, Bhaskar N, Shaji SJK, Mini M. First report of detection and molecular characterization of porcine parvovirus in domestic and wild pigs in Kerala, India. Virusdisease 2016;27(3):311–314. DOI: https://doi.org/10.1007/s13337-016-0330-z

Carr J, Chen S, Connor JF, Kirkwood RN, Segalés J. Pig Health. Boca Ratón, USA:CRC Press; 2018. DOI: https://doi.org/10.1201/9781315157061

Knipe D, Howley M, Peter M. Fields Virology. Lippincott Williams and Wilkins, a Wolters Kluwer Business. USA. 2013.

Truyen U, Streck A. Parvoviruses relevance etiology. In: Zimmerman J, et al, editors Diseases of swine.11th ed., USA: Wiley Blackwell; 2009:611–621. DOI: https://doi.org/10.1002/9781119350927.ch38

Mengeling WL, Lager KM, Vorwald, AC. The effect of porcine parvovirus and porcine reproductive and respiratory syndrome virus on porcine reproductive performance. Anim Reprod Sci 2000;60:199–210. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00135-4

Pardave P. Estudio de parvovirus porcino en granjas de la Piedad Michoacán [tesis Maestria). Universidad Nacional Autónoma de México. 2013.

Ladekjær-Mikkelsen AS, Nielsen JA. Longitudinal study of cell-mediated immunity in pigs infected with porcine parvovirus. Viral Immunol 2002;15(2):373–384. DOI: https://doi.org/10.1089/08828240260066297

Ni J, Qiao C, Han X, Han T, Kang W, Zi Z, Cao Z, Zhai X, Cai X. Identification and genomic characterization of a novel porcine parvovirus (PPV6) in China. Virol J 2014;11(1):1–8. DOI: https://doi.org/10.1186/s12985-014-0203-2

Ren X, Tao Y, Cui J, Suo S, Cong Y, Tijssen P. Phylogeny and evolution of porcine parvovirus. Virus Res 2013;178(2):392–397. DOI: https://doi.org/10.1016/j.virusres.2013.09.014

Mészáros I, Olasz F, Cságola A, Tijssen P, Zádori Z. Biology of porcine parvovirus (Ungulate parvovirus 1). Viruses 2017;9(12):393. DOI: https://doi.org/10.3390/v9120393

PIC. Sow & Gilt Management Manual. USA. 2015.

Stephano A. Aislamiento, aclimatación y manejo de los animales de reemplazo en México - 3tres3.com. Comunidad profesional porcina. 2001. Madrid, España.

Morrilla A. Manual para el control de las enfermedades infecciosas de los cerdos. 2a ed. México, Manual Moderno; 2005.

Cheung AK, Wu G, Wang D, Bayles DO, Lager KM, Vincent AL. Identification and molecular cloning of a novel porcine parvovirus. Arch Virol 2010;155(5):801–806. DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-010-0646-8

Saekhow P, Kishizuka S, Sano N, Mitsui H, Akasaki H, Mawatari T, Ikeda H. Coincidental detection of genomes of porcine parvoviruses and porcine circovirus type 2 infecting pigs in Japan. J Vet Med Sci 2015;77(12):1581–1586. DOI: https://doi.org/10.1292/jvms.15-0167

Xing X, Zhou H, Tong L, Chen Y, Sun Y, Wang H, Zhang G. First identification of porcine parvovirus 7 in China. Arch Virol 2018;163(1):209–213. DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-017-3585-9

Xiao CT, Gerber PF, Giménez-Lirola LG, Halbur PG, Opriessnig T. Characterization of porcine parvovirus type 2 (PPV2) which is highly prevalent in the USA. Vet Microbiol 2013;161(3–4):325–330. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2012.07.038

Xiao CT, Giménez-Lirola LG, Jiang YH, Halbur PG, Opriessnig T. Characterization of a novel porcine parvovirus tentatively designated PPV5. PLoS ONE 2013;8(6):1–11. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0065312

Cui J, Biernacka K, Fan J, Gerber PF, Stadejek T, Opriessnig T. Circulation of porcine parvovirus types 1 through 6 in serum samples obtained from six. Transbound Emerg Dis 2017;64(6):1945–1952. DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.12593

Saekhow P, Mawatari T, Ikeda, H. Coexistence of multiple strains of porcine parvovirus 2 in pig farms. Microbiol Immunol 2014;58(7):382–387. DOI: https://doi.org/10.1111/1348-0421.12159

Garcia-Camacho LA, Vargas-Ruiz A, Marin-Flamand E, Ramírez-Álvarez H, Brown C. A retrospective study of DNA prevalence of porcine parvoviruses in Mexico and its relationship with porcine circovirus associated disease. Microbiol Immunol 2020;64(5):366–376. DOI: https://doi.org/10.1111/1348-0421.12782

Cobos L, Valdéz L. Manual de prácticas: Temas selectos de profundización disciplinaria en virologia veterinaria. UNAM-FMVZ. México. 2015.

Rubí NPGC, Martínez-Castañeda, FE., Trujillo HE, Silva RES, Beltrán FR, García-Hernández ME, Trujillo-Ortega ME. Evaluation of sow seroconversion with the use of inoculum at different doses and vehicles against porcine epidemic diarrhea. Rev Mex Cien Pecu 2023;14(2):466–475. DOI: https://doi.org/10.22319/rmcp.v14i2.6146

Vierra A, Garcia M, Andreadis A. Survival analysis. In: Eltorai AEM, Bakal JA, Newell PC, Osband AJ. Handbook for designing and conducting clinical and translational surgery. Academic Press – Elsevier. 2023;487–490. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-323-90300-4.00026-4

Brown H, Prescott R. Generalized linear mixed models. In: Brown H, Prescott R. Applied mixed models in medicine: 3er ed. Willey. 2014:113-167. DOI: https://doi.org/10.1002/9781118778210.ch3

Molenberghs G, Verbeke G. A model for longitudinal data. In: Linear mixed models for longitudinal lata. USA: Springer; 1997:19-29. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4612-2294-1

Uzal FA, Glenn SJ. In: Diseases of swine. Zimnerman J. Clostridial diseases. 11ava ed. USA: John Wiley and Sons, Inc; 2019:792–806. DOI: https://doi.org/10.1002/9781119350927.ch51

Zimnerman J. Diseases of swine. In Frana TS, Hau SJ. Staphylococcosis. 11ava ed. USA: John Wiley and Sons, Inc: 2019;926–933. DOI: https://doi.org/10.1002/9781119350927.ch60

Klonowska A, Moulin L, Ardley JK, Braun F, Gollagher MM, Zandberg JD, et al. Novel heavy metal resistance gene clusters are present in the genome of Cupriavidus neocaledonicus STM 6070, a new species of Mimosa pudica microsymbiont isolated from heavy-metal-rich mining site soil. BMC Genomics 2020;21(1):1–18. DOI: https://doi.org/10.1186/s12864-020-6623-z

Tiwari S, Nanda M. Bacteremia caused by Comamonas testosteroni an unusual pathogen. J Lab Physicians 2019;11(1):87-90. DOI: https://doi.org/10.4103/JLP.JLP_116_18

DasSarma S, Coker JA, DasSarma PA. Encyclopedia of microbiology, 3ra ed, 2009;1–23. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-012373944-5.00108-5

Li Q. Bacterial infection and microbiota in carcinogenesis and tumor development. Front Cell Infect Microbiol 2023;13:1-13. DOI: https://doi.org/10.3389/fcimb.2023.1294082

Qiu T, Zuo Z, Gao J, Gao M, Han M, Sun L, Zhang L, Wang, X. Diaphorobacter polyhydroxybutyrativorans sp. nov., a novel poly (3-hydroxybutyrate-co-3- hydroxyvalerate)-degrading bacterium isolated from biofilms. IJSEM, 2015;65(9):2913–2918. DOI: https://doi.org/10.1099/ijs.0.000353

Velegraki A, Cafarchia C, Gaitanis G, Iatta R, Boekhout T. Malassezia infections in humans and animals: Pathophysiology, detection, and treatment. PLoS One 2015;11(1):e1004523. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1004523

Dahal P, Singh-Phulgenda S, Maguire BJ, Harriss E, Ritmeijer K, Alves F, Guerin PJ, Olliaro PL. Visceral leishmaniasis in pregnancy and vertical transmission: A systematic literature review on the therapeutic orphans. PLoS One 2021;15(8):e0009650. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0009650

Ma Y, Lu M, Xu S, Wu J, Tian K, Zhang J. Identification of full-length proviral DNA of porcine endogenous retrovirus from Chinese Wuzhishan miniature pigs inbred. Comp Immunol Microbiol Infect Dis 2010;33(4):323–331. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cimid.2008.10.007

Gava D, Souza CK, Schaefer R, Vincent AL, Cantão ME, Coldebella A, Ciacci-Zanella JR. A TaqMan-based real-time PCR for detection and quantification of porcine parvovirus 4. J Virol Methods 2015;219:14–17. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2015.03.011

Kim SC, Kim JH, Kim JY, Park GS, Jeong CG, Kim WI. Prevalence of porcine parvovirus 1 through 7 (PPV1-PPV7) and co-factor association with PCV2 and PRRSV in Korea. BMC Vet Res 2022;18(1):133. DOI: https://doi.org/10.1186/s12917-022-03236-1

Afolabi KO, Iweriebor BC, Okoh AI, Obi LC. Increasing diversity of swine parvoviruses and their epidemiology in African pigs. Infect Genet Evol 2019;73:175–183. DOI: https://doi.org/10.1016/j.meegid.2019.04.029

Lau SKP, Woo PCY, Tse H, Fu CTY, Au WK, Chen XC, et al. Identification of novel porcine and bovine parvoviruses closely related to human parvovirus 4. J Gen Virol 2008;89(8):1840–1848. DOI: https://doi.org/10.1099/vir.0.2008/000380-0

Miłek D, Woźniak A, Guzowska M, Stadejek T. Detection patterns of porcine parvovirus (PPV) and novel porcine parvoviruses 2 through 6 (PPV2–PPV6) in Polish swine farms. Viruses 2019;11(5):474. DOI: https://doi.org/10.3390/v11050474

Miłek D, Woźniak A, Podgórska K, Stadejek T. Do porcine parvoviruses 1 through 7 (PPV1-PPV7) have an impact on porcine circovirus type 2 (PCV2) viremia in pigs? Vet Microbiol 2020;242:108613. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2020.108613

Cano P. Identificación de parvovirus porcino (PVP), análisis productivo, reproductivo y económico en una granja porcina de ciclo completo, después de un brote de diarrea epidémica porcina (DEP) [tesis Licenciatura]. Universidad Nacional Autónoma de México. 2018.

Luevano J, Sarmiento R, Mendoza S, Trujillo, ME. Valoración de la vacunación contra parvovirus porcino en granjas afectadas previamente a diarrea epidémica porcina [tesis Maestría]. Universidad Nacional Autónoma de México. 2020.

Luevano J, Molina R, Díaz C, Martinez F, Trujillo, ME. Descripción de un brote de parvovirus porcino en una granja de ciclo completo en el norte de Sonora. Congreso Nacional e Internacional Virtual AMVEC. 2021.

Noguera M, Vela A, Kraft C, Chevalier M, Goutebroze S, de Paz X, Kunze M, Rathkjen P, Schacht E, Garcia-Morante B. Effects of three commercial vaccines against porcine parvovirus 1 in pregnant gilts. Vaccine 2021;39(29):3997–4005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2021.05.042

Garcia-Morante B, Noguera M, Klocke S, Sommer K, Bridger P. Duration of immunity against heterologous porcine parvovirus 1 challenge in gilts immunized with a novel subunit vaccine based on the viral protein 2. BMC Vet Res 2020;16(184):2-10. DOI: https://doi.org/10.1186/s12917-020-02394-4

Streck AF, Gava D, Souza CK, Gonçalves KR, Bortolozzo FP, Wentz I, Canal C W. Das Vorhandensein von Porzinem Parvovirus in Serum von Schweinen ist unabhängig vom Antikörpertiter. Berl tierarztl, 2011;124(5–6):242–246.

Csa´gola A, Lorincz M, Toba´cz K, Tuboly T. Intermittent elimination of Porcine Parvovirus 4 (PPV4) in naturally infected swine semen: first report Seminal: Cienc Agrar 2018;39(5):2281-2285. DOI: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2018v39n5p2281

Publicado

18.06.2025

Cómo citar

Luevano Adame, J. de la L., Martínez Castañeda, F. E., Sarmiento Silva, R. E., Díaz Rayo, C., Gonzáles Peraza, F., Molina Barrios, R. M., … Trujillo Ortega, M. E. (2025). Determinación de la seroconversión inducida por dos tratamientos contra parvovirus porcino e identificación del parvovirus porcino 4 en cerdas con signología reproductiva. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 16(2), 363–384. https://doi.org/10.22319/rmcp.v16i2.6787
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