Incubación, pre-lisis y post-purificación en el rendimiento y pureza de ácidos nucleicos extraídos de sangre de cabras domésticas contenida en tarjetas FTA

Autores/as

  • Carolina Sancho-Blanco Universidad Nacional, Costa Rica. Campus Omar Dengo, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Escuela de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Análisis Genómico (LAGEN). Costa Rica.
  • Esteban J. Jiménez-Alfaro Universidad Nacional, Costa Rica. Facultad de Ciencias de la Tierra y el Mar, Escuela de Ciencias Agrarias. Costa Rica. https://orcid.org/0000-0001-9258-4119
  • Ramón Molina-Bravo Universidad Nacional, Costa Rica. Facultad de Ciencias de la Tierra y el Mar, Escuela de Ciencias Agrarias, Laboratorio de Biología Molecular. Costa Rica. https://orcid.org/0000-0001-5564-4426
  • Rodolfo Umaña-Castro Universidad Nacional, Costa Rica. Campus Omar Dengo, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Escuela de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Análisis Genómico (LAGEN). Costa Rica. https://orcid.org/0000-0003-0041-2788

DOI:

https://doi.org/10.22319/rmcp.v13i1.5890

Palabras clave:

ADN, Columnas de sílice, CTAB, Fenol-cloroformo, Chelex, PCR, Rumiantes menores

Resumen

Técnicas moleculares requieren extracciones de ácidos nucleicos en cantidad y pureza adecuadas. Este trabajo describe un modelo lineal generalizado (GLM) de un factor ajustado con efectos fijos sobre el rendimiento de ácido nucleico (ng/μl) y la pureza (A260/A280 y A260/A230), para cinco métodos de extracción de ADN utilizando tarjetas FTA con sangre de cabra (Capra aegagrus hircus). Se ensayaron dos métodos comerciales basados en columnas de sílice (Invitrogen y Macherey Nagel; MN), método resina quelante (Chelex), método CTAB y el método de fenol-cloroformo-alcohol isoamílico (PCI). Adicionalmente, para MN, se evaluó una etapa de incubación con tampón PBS (Phosphate Buffered Saline) en alta temperatura previa a la lisis y una etapa de purificación posterior a la extracción utilizando un modelo de efecto fijo de dos factores con interacción. Las concentraciones de ADN y las proporciones de pureza fueron variables; la concentración más alta se obtuvo con el kit MN (170.45 ng/μl), pero con deficiencias en la pureza (0.32 de A260/A230, 0.34 de A260/A280). A pesar de esto, todos los métodos de extracción generaron productos PCR con cebadores específicos D-loop (ADNmt). El efecto combinado de las etapas de pre-incubación y post-purificación arrojó valores de pureza satisfactorios (1.89 para A260/A230 y 1.65 para A260/A280), así como relaciones de concentración (476.78 ng/μl) con baja variabilidad. En conclusión, la concentración y pureza del ADN de muestras de sangre mejora considerablemente cuando se usa un kit comercial en combinación con incubación previa a la lisis y purificación posterior a la extracción. Estos ácidos nucleicos se sugieren para uso en potenciales aplicaciones moleculares a posteriori.

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Biografía del autor/a

Carolina Sancho-Blanco, Universidad Nacional, Costa Rica. Campus Omar Dengo, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Escuela de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Análisis Genómico (LAGEN). Costa Rica.

Investigadora Laboratorio de Análisis Genómico (LAGEN), Escuela de Ciencias Biológicas, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UNA, Costa Rica. 

Esteban J. Jiménez-Alfaro, Universidad Nacional, Costa Rica. Facultad de Ciencias de la Tierra y el Mar, Escuela de Ciencias Agrarias. Costa Rica.

Investigador Escuela de Ciencias Agrarias, Facultad de Ciencias de la Tierra y el Mar.

Ramón Molina-Bravo, Universidad Nacional, Costa Rica. Facultad de Ciencias de la Tierra y el Mar, Escuela de Ciencias Agrarias, Laboratorio de Biología Molecular. Costa Rica.

Investigador Escuela de Ciencias Agrarias, Facultad de Ciencias de la Tierra y el Mar.

Rodolfo Umaña-Castro, Universidad Nacional, Costa Rica. Campus Omar Dengo, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Escuela de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Análisis Genómico (LAGEN). Costa Rica.

Coordinador Laboratorio de Análisis Genómico (LAGEN), Escuela de Ciencias Biológicas, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, UNA, Costa Rica.

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Publicado

11.04.2022

Cómo citar

Sancho-Blanco, C., Jiménez-Alfaro, E. J., Molina-Bravo, R., & Umaña-Castro, R. (2022). Incubación, pre-lisis y post-purificación en el rendimiento y pureza de ácidos nucleicos extraídos de sangre de cabras domésticas contenida en tarjetas FTA. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 13(1), 311–322. https://doi.org/10.22319/rmcp.v13i1.5890
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