Distribución corporal de garrapatas (Acari: Ixodidae y Argasidae) asociadas a Odocoielus virginianus (Artiodactyla: Cervidae) y Ovis canadensis (Artiodactyla: Bovidae) en tres estados del norte de México

Autores/as

  • Mariana Cuesy León Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México.
  • Zinnia Judith Molina Garza Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México. http://orcid.org/0000-0002-1375-7032
  • Roberto Mercado Hernández Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México.
  • Lucio Galaviz Silva Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México. http://orcid.org/0000-0002-8220-6314

DOI:

https://doi.org/10.22319/rmcp.v12i1.5283

Palabras clave:

Venado cola blanca, Borrego cimarrón, Garrapatas, Rhipicephalus microplus, Otobius megnini, Dermacentor nitens, Dermacentor hunteri

Resumen

Las garrapatas impactan como vectores por transmitir patógenos de importancia médica y veterinaria en México, pero los estudios taxonómicos de abundancia, prevalencia, intensidad y preferencia en la distribución corporal de venado cola blanca (Odocoileus virginianus) y borrego cimarrón (Ovis canadensis) son precarios, por lo cual estos fueron los objetivos del presente trabajo en Sonora, Nuevo León y Tamaulipas, México. El área de estudio abarcó ranchos cinegéticos autorizados donde se practica la cacería. Se examinaron 233 O. virginianus y cuatro O. canadensis, recolectándose 372 garrapatas [21 ninfas (5.65 %) y 351 adultos (94.35 %)]; 41 % fueron hembras y 59 % machos. Las garrapatas presentes en O. virginianus fueron Otobius megnini, Rhipicephalus (Boophilus) microplus y Dermacentor (Anocentor) nitens, mientras que Dermacentor hunteri fue la única en O. canadensis. Las orejas fue la región más infestada (83 hembras, 70 machos y 21 ninfas, 46.77 % en total) y la menos infestada fueron las piernas (10 machos y nueve hembras, 5.1 %), con diferencia significativa (P<0.005). Este estudio reporta por primera vez la abundancia, intensidad y prevalencia de garrapatas en O. virginianus en el norte de México y particularmente en los estados de Tamaulipas y Nuevo León, pues solo las garrapatas de O. canadensis habían sido reportadas en Sonora. Estos resultados indican que, aunque los ungulados están en semicautiverio, es importante controlar la infestación por garrapatas de acuerdo a los sitios de adherencia preferidos para aplicar los tratamientos acaridas, debido a la importancia como vectores en la transmisión de patógenos.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Mariana Cuesy León, Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México.

Departamento de Zoología de Invertebrados No Artrópoda

Zinnia Judith Molina Garza, Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México.

Facultad de Ciencias Biológicas

Lucio Galaviz Silva, Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Ave. Universidad S/N, Ciudad Universitaria. 66455 San Nicolás de los Garza, Nuevo León. México.

Facultad de Ciencias Biológicas

Citas

Klompen JSH, Black WC, Keirans JE, Oliver Jr JH. Evolution of Ticks. Annu Rev Entomol 1996;41:141–161. doi:10.1146/annurev.en.41.010196.001041.

García-Vázquez Z. Garrapatas que afectan al ganado bovino y enfermedades que trasnmiten en México. 1er. Simposium de Salud y Producción de Bovinos de Carne en la Zona Norte-Centro de México 2010;1–9. http://biblioteca.inifap.gob.mx:8080/jspui/handle/123456789/3281 Consultado 5 Jun, 2019.

Rodríguez-Vivas RI, Ojeda-Chi MM, Rosado-Aguilar JA, Trinidad-Martínez IC, Torres-Acosta JFJ, Ticante-Perez V, et al. Red deer (Cervus elaphus) as a host for the cattle tick Rhipicephalus microplus (Acari: Ixodidae) in Yucatan, Mexico. Exp Appl Acarol 2013;60:543–552. doi:10.1007/s10493-013-9672-z.

Koneman E, Koneman AS: Diagnostico microbiologico/Texto y atlas en color. 6ta ed. Buenos Aires, Argentina: Editorial Médica Panamericana; 2008.

Claerebout E, Losson B, Cochez C, Casaert S, Dalemans AC, De Cat A, et al. Ticks and associated pathogens collected from dogs and cats in Belgium. Parasit Vectors 2013;6:183. doi:10.1186/1756-3305-6-183.

Sosa-Gutiérrez G, Vargas M, Torres J. Gordillo-Pérez G. Tick-borne rickettsial pathogens in rodents from Mexico. J Biomed Sci Eng 2014;7:884–889. doi:10.4236/jbise.2014.711087.

CDC. Centers for Disease Control and Prevention. New & Emerging Tickborne diseases: Agents, clinical features & surveillance. 2018. https://www.cdc.gov/ticks/diseases/trends.html#2013-video Accessed 12 Sept, 2018.

Bush JD, Stone NE, Nottingham R, Araya-Anchetta A, Lewis J, Hochhalter C, et al. Widespread movement of invasive cattle fever ticks (Rhipicephalus microplus) in southern Texas leads to shared local infestations on cattle and deer. Parasit Vectors 2014;7:188. doi:10.1186/1756-3305-7-188.

Shaw MT, Keesing F, McGrail R, Ostfeld RS. Factors influencing the distribution of larval blacklegged ticks on rodent hosts. Am J Trop Med Hyg 2003;68:447–452.

Blagburn BL, Dryden MW. Biology, treatment, and control of flea and tick infestations. Vet ClinNorth Am Small Anim Pract 2009;39:1173–1200. doi:10.1016/j.cvsm.2009.07.001.

Ruiz-Fons F, Fernandez de Mera IG, Pelayo-Acevedo UH, Höfle U, Vicente J, De la Fuente J, et al. Ixodid ticks parasitizing Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) and European wild boar (Sus scrofa) from Spain : Geographical and temporal distribution Vet Parasitol 2006;140:133–142. doi:10.1016/j.vetpar.2006.03.033.

Vor T, Kiffner C, Hagedorn P, Niedrig M, Ru F. Tick burden on European roe deer (Capreolus capreolus). Exp Appl Acarol 2010;51:405–417. doi:10.1007/s10493-010-9337-0.

Martínez Arzate SG. Análisis filogenético molecular de la secuencia de la proteína Bm86 de la garrapata Rhipicephalus (boophilus) microplus de Colima, México [tesis maestria]. Toluca, Estado de México. Universidad Autónoma del Estado de México; 2014.

SENASICA. Situación actual del control de la garrapata Boophilus spp. 2016. https://www.gob.mx/senasica/documentos/situacion-actual-del-control-de-la-garrapata-boophilus-spp. Consultado 20 Sept, 2019.

Rodríguez Vivas RI, Grisi L, Pérez de León A, Silva Villela H, Torres Acosta J, Fragoso H, et al. Potential economic impact assessment for cattle parasites in Mexico. Review. Rev Mex Cienc Pecu 2017;8(1):61-74.

OVIS. PROGRAMAS.2011. http://ovis.org.mx/programas/ Consultado 10 Nov, 2017.

SEMARNAT. Reglamento de la ley general de vida silvestre. Diario Oficial de La Federación; 2014; DOF 09-05-2014. 1–52. http://biblioteca.semarnat.gob.mx/janium/Documentos/Ciga/agenda/DOFsr/DO2008.pdf. Consultado 15 Abr, 2018.

SEMARNAT. Registros de unidades de manejo para la conservación de la vida silvestre (UMA). 2019. https://datos.gob.mx/busca/dataset/registros-de-unidades-de-manejo-para-la-conservacion-de-la-vida-silvestre-uma/resource/8815e80b-1779-469f-80b8-b4a4756f61c3.

INEGI. Cuentame. 2017. http://www.inegi.org.mx/ http://www.cuentame.inegi.org.mx/monografias/informacion/son/territorio/div_municipal.aspx?tema=me&e=26. Consultado 21 Mar, 2018.

OCDE. (2018). Nuevo Laredo, Tamaulipas | OCDE Mexico. http://www.ocdemexico.org.mx/Tamaulipas/Nuevo-Laredo/. Consultado Mar 25, 2018.

Warwick BT, Bak E, Baldassare J, Gregg E, Kioko J, Saning K, et al. Abundance estimations of ixodid ticks on Boran cattle and Somali sheep in Northern Tanzania. Int J Acarol 2016;42:12–17. doi:10.1080/01647954.2015.1109708.

Amerasinghe F, Breisch N, Azad A. Distribution, density, and Lyme disease spirochete infection in Ixodes dammini (Acari: Ixodidae) on white-tailed deer in Maryland. J Med Entomol 1992;29:54–61.

Keirans JE, Litwak TR. Pictorial key to the adults of hard ticks, family Ixodidae (Ixodida: Ixodoidea), east of the Mississippi River. J Med Entomol 1989;26:435–448.

Delabra G, Fragoso H, Franco R, Martínez F, Ortiz M, Ortiz A, et al. Manual de identificación de las especies de garrapatas de importancia en México. México: Dirección General de Salud Animal. Secretaría de Agricultura, Ganadería y Desarrollo Rural. 1996.

Walker AR, Bouattor A, Camicas J, Estrada-Pena, Horak IG, Latiff A, et al. Ticks of domestic animals in Africa, a guide to identification of species. Edinburgh Scotland, U.K: Bioscience Reports. 2014.

Bush AO, Lafferty KD, Lotz JM, Shostak AW. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited. J Parasitol 1997;83(4):575-583.

Busch JD, Stone NE, Nottingham R, Araya-Anchetta A, Lewis J, Hochhalter, et al. Widespread movement of invasive cattle fever ticks (Rhipicephalus microplus) in southern Texas leads to shared local infestations on cattle and deer. Parasit Vectors 2014;7:188.

Wang HH, Teel PD, Grant WE, Schuster G, Pérez de León AA. Simulated interactions of white-tailed deer (Odocoileus virginianus), climate variation and habitat heterogeneity on southern cattle tick (Rhipicephalus (Boophilus) microplus) eradication methods in south Texas, USA. Ecol Modell 2016;342:82–96.

Cantú-Martinez M, Salinas-Meléndez JA, Zarate-Ramos J, Ávalos-Ramírez R, Martínez-Muñoz A, Segura-Correa J. Prevalence of antibodies against Babesia bigemina and B. bovis in white-tailed deer (Odocoileus virginianus texanus) in farms of northeastern Mexico. J Anim Vet Adv 2008;7:121–123.

Medrano C, Boadella M, Barrios H, Cantú A, García Z, De la Fuente J, et al. Zoonotic pathogens among white-tailed deer, northern Mexico, 2004-2009. Emerg Infect Dis 2012;18:1372–1374.

Ojeda-Chi M, Rodriguez-Vivas RI, Esteve-Gasent MD, Pérez de León A, Modarellid J J, Villegas-Perez S. Molecular detection of rickettsial tick-borne agents in white-tailed deer (Odocoileus virginianus yucatanensis), mazama deer (Mazama temama), and the ticks they host in Yucatan, Mexico. Ticks Tick Borne Dis 2019;10:365-370. doi: 10.1016/j.ttbdis.2018.11.018

Guzmán-Cornejo C, Robbins RG, Guglielmone AA, Montiel-Parra G, Rivas G, Pérez TM. The Dermacentor (Acari, Ixodida, ixodidae) of Mexico: Hosts, geographical distribution and new records. ZooKeys 2016;569:1–22. doi:10.3897/zookeys.569.7221.

Schwint ON, Knowles DP, Ueti MW, Kappmeyer LS, Scoles GA. Transmission of Babesia caballi by Dermacentor nitens (Acari: Ixodidae) is restricted to one generation in the absence of alimentary reinfection on a susceptible equine host. J Med Entomol 2008;45:1152–1155. doi:10.1603/0022-2585(2008)45[1152:TOBCBD]2.0.CO;2.

Nava S, Mangold J, Guglielmone AA. Field and laboratory studies in a Neotropical population of the spinose ear tick, Otobius megnini. Med Vet Entomol 2009;23:1–5. doi:10.1111/j.1365-2915.2008.00761.x

Cakabay T, Gokdogan O, Kocyigit M. Human otoacariasis : Demographic and clinical outcomes in patients with ear-canal ticks and a review of literature. J Otol 2016;11:111–117. doi:10.1016/j.joto.2016.06.003.

Niebuhr CN, Mays SE, Breeden JB, Lambert BD, Kattes DH. Efficacy of chemical repellents against Otobius megnini (Acari :Argasidae) and three species of ixodid ticks. Exp Appl Acarol 2014;64:99-107. doi:10.1007/s10493-014-9799-6.

Almada Resende JDS, Daemon E, De Olivera Montero CM, Maturano R, Prata DA, Rodrigues AFS. Toxicity of solvents and surfactants to Amblyomma cajennense (Fabricius, 1787) (Acari:Ixodidae) and Dermacentor nitens (Neumann, 1897) (Acari : Ixodidae) larvae. Exp Parasitol 2012;131:139–142. doi:10.1016/j.exppara.2012.03.002.

Diyes GCP, Rajakaruna RS. Seasonal dynamics of spinose ear tick Otobius megnini associated with horse otoacariasis in Sri Lanka. Acta Trop 2016;159:170–175. doi:10.1016/j.actatropica.2016.03.025.

Crosbie P, Goff W, Stiller D, Jessup D. The distribution of Dermacentor hunteri and Anaplasma sp. in desert bighorn sheep (Ovis canadensis). Med Vet Entomol 1997;83:31–37.

De la Fuente J, Atkinson MW, Hogg JT, Miller DS, Naranjo V, Almazán C, et al. Genetic characterization of Anaplasma ovis strains from bighorn sheep in Montana. J Wildl Dis 2006;42:381–385. doi:10.7589/0090-3558-42.2.381.

Stiller D, Crosbie PR, Boyce WM, Goff WL. Dermacentor hunteri (Acari: Ixodidae): an experimental vector of Anaplasma marginale and A. ovis (Rickettsiales:Anaplasmataceae) to calves and sheep. J Med Entomol 1999;36:321–324.

Yabsley MJ, Davidson WR, Stallknecht DE, Varela AS, Swift PK, Devos JC, et al. Evidence of tick-borne organisms in mule deer (Odocoileus hemionus) from the Western United States. Vector Borne Zoonotic Dis 2005;5:351–362.

Bloemer SR, Zimmerman RH, Fairbanks K. Abundance, attachment sites, and density estimators of lone star ticks (Acari:Ixodidae) infesting white-tailed deer. J Med Entomol 1988;25:95–300. doi:10.1093/jmedent/25.4.295.

L’Hostis M, Diarra O, Seegers H. Sites of attachment and density assessment of female Ixodes ricinus (Acari:Ixodidae) on dairy cows. Exp Appl Acarol 1994;18:681–689. doi:10.1007/BF00051535

Coronel-Benedett KC, Ojeda-Robertos NF, Gonzalez-Garduño R, Martinez- Ibañez F, Rodriguez-Vivas RI. Prevalence , intensity and population dynamics of hard ticks (Acari :Ixodidae ) on sheep in the humid tropics of Mexico. Exp Appl Acarol 2018:74:99-105.

Kiffner C, Lödige C, Alings M, Vor T, Rühe F. Body-mass or sex-biased tick parasitism in roe deer (Capreolus capreolus). A GAMLSS approach. Med Vet Entomol 2011;25:39–44. doi:10.1111/j.1365-2915.2010.00929.x

Han S, Hickling GJ, Tsao JI. High Prevalence of Borrelia miyamotoi among adult blacklegged ticks from white-tailed deer. Emerg Infect Dis 2016;22: 22–24.

Pound JM, George JE, Kammlah DM, Lohmeyer KH, Davey RB. Evidence for role of white-tailed deer (Artiodactyla: Cervidae) in epizootiology of cattle ticks and Southern cattle ticks (Acari:Ixodidae) in reinfestations along the Texas/Mexico border in South Texas: A Review and Update. J Econ Entomol 2010;103:211–218. doi:10.1603/EC09359

Publicado

15.06.2021

Cómo citar

Cuesy León, M., Molina Garza, Z. J., Mercado Hernández, R., & Galaviz Silva, L. (2021). Distribución corporal de garrapatas (Acari: Ixodidae y Argasidae) asociadas a Odocoielus virginianus (Artiodactyla: Cervidae) y Ovis canadensis (Artiodactyla: Bovidae) en tres estados del norte de México. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 12(1), 177–193. https://doi.org/10.22319/rmcp.v12i1.5283
Metrics
Vistas/Descargas
  • Resumen
    1268
  • PDF
    864
  • PDF
    259
  • Full text
    768

Número

Sección

Artículos

Métrica

Artículos similares

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 > >> 

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.