Frecuencia de contaminación y de serotipos de Salmonella enterica y Escherichia coli en una operación integrada de matanza y deshuese de bovinos
DOI:
https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i4.5111Palabras clave:
Escherichia coli, Salmonella spp., Bovinos, Sacrificio, Serotipos, PatotiposResumen
El objetivo fue determinar la frecuencia de contaminación y la diversidad de serotipos de Salmonella enterica (SE) y Escherichia coli (EC) en diferentes etapas de los procesos de matanza y deshuese de bovinos. Se tomaron muestras de heces, canales y cortes primarios (100 de cada tipo) en un rastro Tipo Inspección Federal ubicado en Mexicali, Baja California. EC no se analizó en heces, por ser esta bacteria parte de la microbiota intestinal. La identidad de las cepas se confirmó por métodos bioquímicos y por PCR: genes taxonómicos invA y gadA, para SE y EC, respectivamente. En EC se investigó también la presencia de genes asociados con los principales patotipos. SE tuvo una frecuencia de 34 % en heces, 3 % en canales y 2 % en cortes, siendo Montevideo el serotipo predominante (72.5 % del total de cepas). EC se detectó en canales (34 %) y en cortes (11 %), en concentraciones promedio de 0.012 y 0.33 log UFC cm-2, respectivamente. Aunque varios de los serotipos de EC identificados están asociados con cepas enterotoxigénicas o productoras de toxinas tipo Shiga, ninguno portaba factores de virulencia característicos de estos patotipos. En resumen, las canales y cortes de bovino no son una fuente relevante de cepas patógenas de EC. En contraste, los bovinos constituyen un importante reservorio de SE, lo cual representa un riesgo para la salud pública. Se requieren estudios genómicos sobre el perfil de virulencia y los genes asociados con infecciones subclínicas en cepas de SE provenientes de animales aparentemente sanos
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WHO. WHO estimates of the global burden of foodborne diseases. Foodborne disease burden epidemiology reference group 2007-2015. World Health Organization. http://www.who.int/foodsafety/areas_work/foodborne-diseases/ferg/en/. Accessed Oct 25, 2018.
Croxen MA, Law RJ, Scholz R, Keeney KM, Wlodarska M, Finlay BB. Recent advances in understanding enteric pathogenic Escherichia coli. Clin Microbiol Rev 2013;26(4):822-880.
Koohmaraie M, Scanga JA, De La Zerda MJ, Koohmaraie B, Tapay L, Beskhlebnaya V, et al. Tracking the sources of Salmonella in ground beef produced from nonfed cattle. J Food Protect 2012;75(8):1464-1468.
FAOSTAT. Food Balance Sheets. Food and Agricultural Organization of the United Nations, Statistics Division. http://faostat3.fao.org/download/FB/FBS/E. Consultado 25 Feb, 2019.
Varela-Guerrero JA, Talavera-Rojas M, Gutiérrez-Castillo AC, Reyes-Rodríguez NE, Vázquez-Guadarrama J. Phenotypic-genotypic resistance in Salmonella spp. isolated from cattle carcasses from the north central zone of the State of Mexico. Trop Anim Health Prod 2013;45(4):995-1000.
Hernández-San Juan S, Zúñiga-Estrada A, Sánchez-Ortega I, Castro-Rosas J, Román-Gutiérrez AD, Santos-López EM. Condiciones microbiológicas en el proceso de sacrificio en un rastro municipal del estado de Hidalgo, México. Vet Mex 2007;38(2):187-194.
Pérez-Montaño JA, González-Aguilar D, Barba J, Pacheco-Gallardo C, Campos-Bravo CA, García S, Heredia NL, Cabrera-Díaz E. Frequency and antimicrobial resistance of Salmonella serovars on beef carcasses at small abattoirs in Jalisco State, Mexico. J Food Prot 2012;75(5):867-873.
Gragg SE, Loneragan GH, Nightingale KK, Brichta-Harhay DM, Ruiz H, Elder JR, et al. Substantial within-animal diversity of Salmonella isolates from lymph nodes, feces, and hides of cattle at slaughter. Appl Environ Microbiol 2013;79(15):4744-50.
Narvaez-Bravo C, Miller MF, Jackson T, Jackson S, Rodas-Gonzalez A, Pond K, Echeverry A, Brashears MM. Salmonella and Escherichia coli O157:H7 Prevalence in cattle and on carcasses in a vertically integrated feedlot and harvest plant in Mexico. J Food Prot 2013;76(5):786-795.
Zaidi MB, McDermott P, Fedorka-Cray P, Leon V, Canche C, Hubert S, et al. Nontyphoidal Salmonella from human clinical cases, asymptomatic children and raw retail meats in Yucatan, Mexico. Clin Infect Dis 2006;42:21-28.
Callaway TR, Anderson RC, Téllez G, Rosario C, Nava GM, Eslava C, et al. Prevalence of Escherichia coli O157 in cattle and swine in central Mexico. J Food Prot 2004;67(10):2274-2276.
Amézquita-López BA, Quinones B, Cooley MB, Leon-Felix J, Castro-del Campo N, Mandrell RE, et al. Genotypic analyses of shiga toxin-producing Escherichia coli O157 and non-O157 recovered from feces of domestic animals on rural farms in Mexico. PLoS One 2012;7(12):e51565.
Varela-Hernández JJ, Cabrera-Díaz E, Cardona-López MA, Ibarra-Velázquez LM, Rangel-Villalobos H, Castillo A, et al. Isolation and characterization of Shiga toxin-producing Escherichia coli O157:H7 and non-O157 from beef carcasses at a slaughter plant in Mexico. Int J Food Microbiol 2007;113(2):237-41.
Jekel JF, Katz DL, Elmore JG. Epidemiology, biostatistics, and preventive medicine. Third ed. Philadelphia, PA, United States of America: SAUNDERS ELSEVIER; 2007.
USDA/FSIS. Nationwide Sponge Microbiological Baseline Data Collection Program: Cattle. https://www.fsis.usda.gov/wps/wcm/connect/197ddb9c-1fa5-411e-ab3f-3d253c879370/Baseline_Data_Cattle.pdf?MOD=AJPERES. Accessed Mar 5, 2019.
Barrow GI, Feltham RKA. Cowan and Steel's manual for the identification of medical bacteria. 3rd Ed. ed. Cambridge, United Kingdom: Cambridge University Press; 1993.
Bruins MJ, Bloembergen P, Ruijs GJHM, Wolfhagen MJHM. Identification and susceptibility testing of Enterobacteriaceae and Pseudomona aeruginosa by direct inoculation from positive BACTEC blood culture bottles into Vitek 2. J Clin Microbiol 2004;42(1):7-11.
Rahn K, De Grandis SA, Clarke RC, Curtiss R, Gyles CL. Amplification of an invA gene sequence of Salmonella typhimurium by polymerase chain reaction as a specific method of detection of Salmonella. Mol Cell Probes 1992;6:271-279.
McDaniels AE, Rice EW, Reyes AL, Johnson CH, Haugland RA, Stelma GNJ. Confirmational identification of Escherichia coli, a comparison of genotypic and phenotypic assays for glutamate decarboxylase and β-d-glucuronidase. Appl Environ Microbiol 1996;62(9):3350-3354.
DebRoy C, Roberts E. Screening petting zoo animals for the presence of potentially pathogenic Escherichia coli. J Vet Diagn Invest 2006;18(6):597-600.
Bisi-Johnson MA, Obi CL, Vasaikar SD, Baba KA, Hattori T. Molecular basis of virulence in clinical isolates of Escherichia coli and Salmonella species from a tertiary hospital in the Eastern Cape, South Africa. Gut Pathog 2011;3(9).
Grimont PAD, Weill F. Antigenic formulae of the Salmonella serovars. WHO Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella, Institut Pasteur. https://www.pasteur.fr/sites/default/files/veng_0.pdf. Accessed Feb 25, 2019.
Popoff MY, Le Minor LE. Salmonella. In: Bergey's Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman FR, et al editors. Hoboken, New Jersey: John Wiley & Sons, Inc.; 2015:764-799
Delgado-Suárez EJ, Selem-Mojica N, Ortiz-López R, Gebreyes WA, Allard MW, Barona-Gómez F, Rubio-Lozano MS. Whole genome sequencing reveals widespread distribution of typhoidal toxin genes and VirB/D4 plasmids in bovine-associated nontyphoidal Salmonella. Sci Rep 2018;8(1):9864.
Ørskov F, Ørskov I. Serotyping of Escherichia coli. Method Microbiol 1984;14:43-112.
Clermont O, Christenson JK, Denamur E, Gordon DM. The Clermont Escherichia coli phylo-typing method revisited: improvement of specificity and detection of new phylogroups. Environ Microbiol Rep 2013;5(1):58-65.
Duan J, Jiang W, Cheng Z, Heikkila JJ, Glick BR. The complete genome sequence of the plant growth-promoting bacterium Pseudomonas sp. UW4. PLoS One 2013;8(3):e58640.
Eguale T, Engidawork E, Gebreyes WA, Asrat D, Alemayehu H, Medhin G, Johnson RP, Gunn JS. Fecal prevalence, serovar distribution and antimicrobial resistance of Salmonellae in dairy cattle in central Ethiopia. BMC Microbiol 2016;16:20.
Sandt CH, Fedorka-Cray PJ, Tewari D, Ostroff S, Joyce K, M'Ikanatha NM. A comparison of non-typhoidal Salmonella from humans and food animals using pulsed-field gel electrophoresis and antimicrobial susceptibility patterns. PLoS One 2013;8(10):e77836.
Khen BK, Lynch OA, Carroll J, McDowell DA, Duffy G. Prevalence and characteristics of Salmonella in the beef chain in the Republic of Ireland. Zoonoses Public Health 2014;61(8):534-6.
Ballesteros-Nova N, Rubio-Lozano MS, Delgado-Suárez EJ, Méndez-Medina RD, Braña-Varela D, Rodas Suárez O. Perfil de resistencia a antibióticos de serotipos Salmonella spp. aislados de carne de res molida en la Ciudad de México. Salud Pública México 2016;58(3):1-7.
Rubio-Lozano MS, Martínez-Bruno JF, Hernández-Castro R, Bonilla-Contreras C, Méndez MRD, Núñez-Espinosa JF, et al. Detección de Listeria monocytogenes, Salmonella y Yersinia enterocolitica en carne de res en puntos de venta en México. Rev Mex Cienc Pecu 2013;4(1):107-115.
Signorini M. Evaluación de riesgos de los rastros y mataderos municipales. Nacameh 2007;1(2):118-141.
Cabrera-Díaz E, Barbosa-Cárdenas CM, Pérez-Montano JA, González-Aguilar D, Pacheco-Gallardo C, Barba J. Occurrence, serovar diversity, and antimicrobial resistance of Salmonella in ground beef at retail stores in Jalisco state, Mexico. J Food Prot 2013;76(12):2004-2010.
Gutiérrez-Cogco L, Montiel-Vázquez E, Aguilera-Pérez P, González-Andrade MC. Serotipos de Salmonella identificados en los servicios de salud de México. Salud Publica Mex 2000;42(6):490-495.
Zaidi MB, Calva JJ, Estrada-García MT, León V, Vázquez G, Figueroa G, et al. Integrated food chain surveillance system for Salmonella spp. in Mexico. Emerg Infect Dis 2008;14(3):429-435.
Habing GG, Manning S, Bolin C, Cui Y, Rudrik J, Dietrich S, Kaneene JB. Within-Farm Changes in dairy farm-associated Salmonella subtypes and comparison to human clinical isolates in michigan, 2000-2001 and 2009. Appl Environ Microbiol 2015;81(17):5724-35.
Webb HE, Brichta-Harhay DM, Brashears MM, Nightingale KK, Arthur TM, Bosilevac JM, et al. Salmonella in peripheral lymph nodes of healthy cattle at slaughter. Front Microbiol 2017;8:2214.
Scallan E, Hoekstra RM, Angulo FJ, Tauxe RV, Widdowson M, Roy SL, et al. Foodborne illness acquired in the united states—major pathogens. Emerg Infect Dis 2011;17(1):7-15.
Gómez-Aldapa CA, Díaz-Cruz CA, Cerna-Cortés JF, Torres-Vitela MR, Villarruel-López A, Rangel-Vargas E. Escherichia coli O157 in ground beef from local retail markets in Pachuca, Mexico. J Food Prot 2013;76(4):680-684.
Gallegos M, Morales A, Álvarez G, Vázquez J, Morales L, Martínez I, Maldonado J. Caracterización de aislados de Escherichia coli O157:H7 en canales de bovinos y porcinos mediante PCR. Revista Científica, FCV-LUZ 2009;XIX(2):139-146.
Chart H, Okubadejo A, Rowe B. The serological relationship between Escherichia coli O157 and Yersinia enteocolitica O9 using sera from patients with brucellosis. Epidemiol Infect 1992;108(1):77-85.
Navarro A, Eslava C, García de la Torre G, León LA, Licona D, León L, Zarco LA, Cravioto A. Common epitopes in LPS of different Enterobacteriaceae are associated with an immune response against Escherichia coli O157 in bovine serum samples. J Med Microbiol 2007;56:1447-1454.
Clermont O, Olier M, Hoede C, Diancourt L, Brisse S, Keroudean M, et al. Animal and human pathogenic Escherichia coli strains share common genetic backgrounds. Infect Genet Evol 2011;11(3):654-662.
Carlos C, Pires MM, Stoppe NC, Hachich EM, Sato MI, Gomes TA, Amaral LA, Ottoboni LM. Escherichia coli phylogenetic group determination and its application in the identification of the major animal source of fecal contamination. BMC Microbiol 2010;1(10):161.
CDC. Center for Disease Control and Prevention. Multistate outbreak of shiga toxin-producing Escherichia coli O145 infections (final update). https://www.cdc.gov/ecoli/2012/o145-06-12/index.html. Accessed Mar 5, 2019.
Blanco M, Blanco JE, Mora A, Dhabi E, Alonso MP, González EA, et al. Serovars, virulence genes, and intimin types of Shiga toxin (verotoxin)-producing Escherichia coli isolates from cattle in Spain and identification of a new intimin variant gene (eae-xi). J Clin Microbiol 2004;42(2):645-651.
Bettelheim KA. The Non-O157 Shiga-Toxigenic (Verocytotoxigenic) Escherichia coli; under-rated pathogens. Crit Rev Microbiol 2007;33(1):67-87.
De Moura C, Ludovico M, Valadares GF, Gatti MSV, Leite DS. Detection of virulence genes in Escherichia coli strains isolated from diarrheic and healthy feces of dairy calves in Brazil. Arq Inst Biol 2012;79(2):273-276.
Martínez-Castillo A, Muniesa M. Implications of free Shiga toxin-converting bacteriophages occurring outside bacteria for the evolution and the detection of Shiga toxin producing Escherichia coli. Front Cell Infect Microbiol 2014;4:46.
Hallewell J, Niu YD, Munns K, McAllister TA, Johnson RP, Ackermann HW, Thomas JE, Standford K. Differing populations of endemic bacteriophages in cattle shedding high and low numbers of Escherichia coli O157:H7 Bacteria in feces. Appl Environ Microbiol 2014;80(13):3819-3825.
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