Calidad seminal de ovinos de pelo suplementados con Moringa oleifera (Moringaceae) y Trichanthera gigantea (Acanthaceae)

Autores/as

  • Marco A. Ramírez-Bautista Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Ave. Tecnológico s/n Conkal, 97345, Yucatán, México. Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Chiná, Campeche, México.
  • Julio P. Ramón-Ugalde Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Ave. Tecnológico s/n Conkal, 97345, Yucatán, México.
  • Edgar Aguilar-Urquizo Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Ave. Tecnológico s/n Conkal, 97345, Yucatán, México.
  • William Cetzal-Ix Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Chiná, Campeche, México. http://orcid.org/0000-0003-4276-6664
  • Roberto Sanginés-García Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Ave. Tecnológico s/n Conkal, 97345, Yucatán, México.
  • Álvaro E. Domínguez-Rebolledo Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias, Campo Experimental Mocochá, Yucatán, México.
  • Ángel T. Piñeiro-Vázquez Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Ave. Tecnológico s/n Conkal, 97345, Yucatán, México.

DOI:

https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i2.5010

Palabras clave:

Células espermáticas viables, Motilidad, Pennisetum purpureum, Rendimiento de canal

Resumen

Se evalúo el efecto de la inclusión de Moringa oleifera Lam. y Trichanthera gigantea (Bonpl.) Nees en la dieta de ovinos de pelo (Pelibuey) sobre su calidad seminal. Durante 90 días, se dividieron las dietas de 15 ovinos (24 kg ± 3.95) en tres tratamientos: T1: dieta integral con 30% de M. oleifera + pasto Taiwán (Pennisetum purpureum Schumach.), T2: dieta integral con 30% de T. gigantea + pasto Taiwán y T3: alimento comercial + pasto Taiwán. Se determinaron la ganancia diaria de peso (GDP), rendimiento de la canal (RC), desarrollo testicular (DT) (determinado por el ancho (AE) y la circunferencia escrotal (CE)), el volumen del eyaculado, concentración y motilidad, viabilidad (SYBR-14/IP), actividad mitocondrial (J-C1) e integridad acrosomal (FITC-PSA) en los espermatozoides. No se encontraron diferencias (p>0.05) en la GDP y RC. Se encontraron diferencias (p˂0.05) en el DT, los T1 (AE = 48.84±5.99 mm, CE = 26.48±1.13 cm) y T3 (AE = 48.83±4.34 mm, CE = 26.62±1.27 cm) presentaron valores más elevados que T2 (AE = 44.57±5.59 mm, CE = 25.42±1.50 cm); en la viabilidad, T2 (62.90±6.10%) y T1 (54.00±6.61%) poseen mayores porcentajes que T3 (24.45±7.56%); en la motilidad, T1 (93.9± 2.1%) y T2 (88.6±1.9%) tuvieron mayor porcentaje que T3 (71.9± 4.0%). La inclusión de M. oleifera y T. gigantea en la dieta permite obtener una GDP, RC y DT similar al alimento comercial e incrementa más del 20% de las células espermáticas viables; también mejora algunos parámetros de motilidad, lo que incrementa el potencial reproductivo de los sementales.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Altieri MC, Nicholls CI. Agroecología. Teoría y práctica para una agricultura sustentable. México: Programa de las Naciones Unidas para el Medio Ambiente Red de Formación Ambiental para América Latina y el Caribe; 2000.

Ramírez MEI. Productive response of pelibueysheep diet supplemented with Moringa oleifera Lam. (Moringaceae) and Trichanthera gigantea (Bonpl.) Nees (Acanthaceae). Int J Agric Sci 2017;8(2):172-176.

Galindo JD. Impacto de los árboles, los arbustos y otras leguminosas en la ecología ruminal de animales que consumen dietas fibrosas. Pastos y Forrajes 2005;28:59-67.

Ruiz-Sesma DL. Evaluación nutritiva y productiva de ovinos alimentados con heno de Hibiscus rosa-sinensis. Zootec Trop 2006;24:467-482.

Apráez JE, Delgado JM, Narváez J. Composición nutricional, degradación in vitro y potencial de producción de gas, de herbáceas, arbóreas y arbustivas encontradas en el trópico alto de Nariño. Livest Res Rural Dev 2012;24(3): http://www.lrrd.org/lrrd24/3/apra24044.htm. Consultado 10 Feb, 2018.

Katsube TT, Tsurunaga Y, Sugiyama M, Furuno T, Yamasaki Y. Effect of air-dryng temperature on antioxidant capacity and stability of polyphenolic compunds in mulberry (Morus alba L.) leaves. Food Chem 2009;113(4):964-969.

Sosa RE. Evaluación del potencial forrajero de árboles y arbustos tropicales para la alimentación de ovios. Téc Pecu Méx 2004;42(2):129-144.

Carmona J. Efecto de la utilización de árboreas y arbustivas forrajeras sobre la dinámica digestiva en bovinos. Rev Lasallista Investig 2007;4(1):40-50.

Rivera LJ, Ramon UJ. Factores antinutricionales del recursos forrajero disponible en Yucatán como una posibilidad para mitigar el efecto de los gases invernadero causados por los rumiantes. In: Dumonteil E editor. Contribución de la biotecnología al desarrollo de la Peninsula de Yucatán. Mérida: Fondo Mixto CONACYT-Gobierno del Estado de Yucatán. 2012;99-115.

Lenis YG. Efectos de los fitoestrógenos en la reproducción animal. Rev Fac Nac Agron 2010;63(2):5555-5565.

Retana-Márquez S, Hernández H, Flores JA, Muñoz-Gutiérrez M, Duarte G, Vierlma J, Fitz-Rodríguez G, Fernández IG, Keller M, Delgadillo JA. Effects of phytoestrogens on mammalian reproductive physiology. Trop Subtrop Agroecosyt 2012;15:129-145.

García D. Evaluación química de especies no leguminosas con potencial forrajero en el estado de Trujillo Venezuela. Zootec Trop 2006;24:401-415.

Balercia G, Armeni T, Mantero F, Principato G, Regoli F. Total oxyradical scavenging capacity toward different reactive oxygen species in seminal plasma and sperm cells. Clin Chem Lab Med 2003;41(1):13-19.

Raijmakers MT, Roelofs HM, Steegers EA, Steegers-Theunissen RR, Mulder TP, Knapen MF, Wong WY, Peters WH. Glutathione and glutathione S-transferases A1-1 and P1-1 in seminal plasma may play a role in protecting against oxidative damage to spermatozoa. Fertil Steril 2003;79(1):169-172.

Ghasi S, Nwobobo E, Ofili JO. Hypocholesterolemic effects of crude extract of leaf of Moringa oleifera Lam. in high-fat diet fed wistar rats. J Ethnopharmacol 2000;69(1):21-25.

Magaña-Monforte JG, Moo-Catzin CJ, Chay-Canul JR, Aké-López JR, Segura-Correa JC, Montés-Pérez RC. Crecimiento y componentes de la canal de ovinos de pelo en jaulas elevadas. Livest Res Rural Dev 2015;27(6).

Jiménez-Severiano HRP. Evaluation of mathematical models to desribe testicular growth in Blackbelly ram lambs. Theriogenology 2010;74(7):117-1114.

Ruiz LS. Evaluación de la calidad espermática del semen ovino posdescongelación al emplear dos fuentes energéticas y dos crioprotectores. Rev Inv Perú 2015;26(1):49-56.

Madera-Solís NB, Bacab-Pérez HM, Ortiz De La Rosa B. Ganancia diaria de peso en ovinos por inclusión de una planta leguminosa (Leucaena leucocephala) en dietas basadas en pasto clon Cuba CT115 (Pennisetum purpureum). Bioagrociencias 2013;6(1):24-31.

Ríos L, Rondón Z, Combellas J, Alvarez R. Uso de morera (Morus sp.) y mata ratón (Gliricidia sepium) como sustituto del alimento concentrado para corderos en crecimiento. Zootec Trop 2005;23:49-60.

Torrescano GR, Sánchez A, Peñúñuri FJ, Velázquez J, Sierra T. Características de la canal y calidad de la carne de ovinos pelibuey, engordados en Hermosillo, Sonora. BIOtecnia 2009;11(1):41-50.

González-González NN, Gutiérrez-González D, García-López R, Fernández-Mayer A. Consumo voluntario y valores metabólicos sanguíneos en caprinos alimentados con mezclas integrales frescas de Moringa oleifera: Penisetum purpureum Clon-OM22. Avances en Investigación Agropecuaria 2015;19:25-36.

Garza-F JD, Owens FN, Welty S. Effect of post-ruminal protein infusion on feed intake and utilization of low quality hay by beef steers. Anim Sci Pap Rep 1991;134:106-113.

Borroto-Pérez A, Negrín-Brito A, Peña-López P, Vega-Báez D. Uso de moringa (Moringa oleifera) para ovinos en crecimiento, como alternativa alimentaria ambientalmente amigable. Universidad  Ciencia 2018;7:78-90.

Luna C, Aguilar JA, Peralta JA, Velázquez JR. Efecto del aceite de palma sobre el crecimiento y capacidad reproductiva de carneros de pelo púberes. Arch Zootec 2013;62(237):45-52.

Ballín FJ, Ochoa MA, Torres G, Morón FJ, Gonzáles JM, Díaz MO. Relación de la edad, peso corporal y medidas morfométricas sobre el inicio de la pubertad en corderos polypay del altiplano potosino. Revista Cientifica LUZ 2013;23:434-439.

Moreno-Cañez E, Ortega-García C, Cáñez-Carrasco MG, Peñúñuri-Molina F. Evaluación del comportamiento posdestete en corral de futuros sementales ovinos de raza Katahdin y Pelibuey en Sonora. TECNOCIENCIA Chihuhua 2013;7(1):7-16.

Aisen EG. Reproducción ovina y caprina. Buenos Aires: Intermedica; 2004.

Mansano MM, Scott C, Souza MD, Torre LT, Vallejo AV, Ferreira SF. Viabilidad de espermatozoides ovinos mantenidos a 5⁰ y 15⁰C en diferentes sistemas de refrigeración. Revista Brasileira de Ciência Veterinária 2014;21(2):122-126.

Carrillo GD, Hernández HD. Caracterización seminal de individuos ovinos criollos colombianos de pelo en el departamento de Sucre. Rev Colombiana Cienc Anim 2016;8(2):197-203.

Córdova-Izquierdo A, Saltijeral-Oaxaca J, Muñoz-Mendoza R, Córdova-Jiménez MS, Cordova -Jimenez CA, Guerra-Liera JE. Efecto del método de obtención de semen ovino sobre la calidad espermática. Rev Electron Vet 2006;7(8):1-5.

Domínguez-Rebolledo AE, Alcaraz-Romero A, Cantón-Castillo JG, Loeza-Concha H, Ramón-Ugalde J. Efecto de la alfalfa (Medicago sativa L.) en la dieta sobre la calidad de los espermatozoides epididimarios de ovinos Katahdin con pelibuey. Reunión científica tecnológica forestal y agropecuaria Tabasco 2014 y III Simposio internacional en producción agroalimentaria tropical. Tabasco: Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias 2014:186-189.

Quintero EJA, Clemente SF, Olguín AHA. Contribución en el desarrollo de un índice de calidad del semen para la valoración de sementales ovinos. CULCYT 2016;58(13):105-109.

Rubio-Guillen J, Quintero-Montero AA, González-Villalobos DM. Efecto de la criopreservación sobre la integridad de la membrana plasmática y acrosomal de espermatozoides de toros. Rev Cient (Maracaibo) 2009;19(4):382-389.

Blanche DZ. Fertility in males: modulators of the acute effects of nutrition on the reproductive axis. Reprod Suppl 2003;59:219-233.

Prieto-Gómez B, Velázquez-Paniagua M. Fisiología de la reproducción: hormona liberadora de gonadotrofinas. Rev Fac Med UNAM 2002;45(6):252-257.

Lozano H. Factores que afectan la calidad seminal en toros. Rev Med Vet Zoot 2009;56:258-272.

Priyadarshani N, Varma MC. Effect of Moringa oleifera leaf poder on sperm count, histology of testis and epididymis of hyperglycaemic mice Mus musculus. Am Int J Res Form Appl Nat Sci 2007;14:7-13.

Publicado

02.06.2020

Cómo citar

Ramírez-Bautista, M. A., Ramón-Ugalde, J. P., Aguilar-Urquizo, E., Cetzal-Ix, W., Sanginés-García, R., Domínguez-Rebolledo, Álvaro E., & Piñeiro-Vázquez, Ángel T. (2020). Calidad seminal de ovinos de pelo suplementados con Moringa oleifera (Moringaceae) y Trichanthera gigantea (Acanthaceae). Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 11(2), 393–407. https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i2.5010
Metrics
Vistas/Descargas
  • Resumen
    1164
  • PDF
    548
  • PDF
    195
  • Texto completo
    107

Número

Sección

Artículos

Métrica

Artículos similares

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 > >> 

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.

Artículos más leídos del mismo autor/a